CE07 - Chimie moléculaire 2023

Production photocatalytique d'hydrocarbures utilisant l'acide gras photodécarboxylase – GreenCatFAP

Projet GreenCatFAP : une photoenzyme robuste pour produire des hydrocarbures

Concevoir une acide gras photodécarboxylase (FAP) plus photostable et adaptée aux acides gras courts pour une production durable de biocarburants.

L’acide gras photodécarboxylase (FAP) est une photoenzyme naturelle qui convertit les acides gras en hydrocarbures. Pour son développement biotechnologique, deux verrous doivent être levés : améliorer sa résistance à la photodégradation et déplacer sa spécificité vers des substrats plus courts (C6-C12), qui permettent d’obtenir des hydrocarbures liquides. GreenCatFAP vise à produire et caractériser des variants de FAP répondant à ces objectifs, afin de contribuer à une production durable de biocarburants et de molécules d’intérêt.

Le projet associe la conception rationnelle, la mutagenèse aléatoire, les calculs de chimie computationnelle et la modélisation moléculaire afin de générer des variants de FAP. Ceux-ci sont étudiés par des approches de biochimie et de biophysique (notamment les spectroscopies et la cristallographie résolues dans le temps), afin d’évaluer leur photostabilité, leur activité catalytique et leur spécificité de substrat.

 

Le consortium s’est renforcé sur le plan des ressources humaines : P1, P2 et P3 ont recruté des doctorants (P1 : Théodore Michielin, P2 : Lison Royer and P3 : Elsa Balduzzi); P4 recherche actuellement un postdoctorant.

 

Le projet a déjà produit des résultats scientifiques majeurs, avec plusieurs publications soutenues par le financement ANR GreenCatFAP. Trois articles récents du consortium illustrent l’avancée des travaux sur le mécanisme et la photoréactivité de FAP :

 

- Michielin, T. C. L., Romero, J. J., Royer, L., D’Mello, V. C., Llansola-Portoles, M. J., Sorigué, D. R.* Müller, P.* Different Photons, Same Chemistry: Identical Mechanism and Efficiency of Fatty Acid Photodecarboxylase under Blue and UV Excitation. ACS Catalysis 2026, doi: 10.1021/acscatal.6c04891.

 

- Bonvalet A., Balduzzi E., Légeret B., Antonucci L., Samire P., Solinas X., Peltier G., Beisson F., Müller P., Joffre M., Hienerwadel R., Vos M. H., Berthomieu C., Aleksandrov A., Sorigué D. R.* Dynamics and Catalytic Conversion of the CO2 Coproduct in Fatty Acid Photodecarboxylase. ACS Catalysis 2026, 16(6), 5744-5756.

 

- Vos M. H.*, Balduzzi E., Sorigué D., Aleksandrov A.* Ultrafast photooxidation of semireduced flavin in fatty acid photodecarboxylase. Science Advances 2025, 11, eadz1904.

 

La cristallographie aux rayons X en série et macromoléculaire a été utilisée pour étudier les dommages spécifiques causés par le rayonnement X aux substrats d’acides gras au sein de la FAP cristalline. Il a été constaté que le substrat présent au niveau du site actif subit une décarboxylation rapide sous l’effet d’une irradiation aux rayons X en l’absence de lumière. À l’inverse, le substrat du site périphérique s’est révélé radiorésistant. Il semble que la photodécarboxylation puisse être reproduite par la radiodécarboxylation, ce qui constitue une approche orthogonale pour évaluer la photo(radio)stabilité des variants de la FAP à générer. Un article décrivant ces résultats est en cours de finalisation en vue de sa soumission:

 

- Rios-Santacruz R., Coquelle N., Gromov E., Hadjidemetriou K., Blangny S., Andreas J., Bury C., Garman E.F., Sorigué D., Burghammer M., Domratcheva T., Colletier J.P., Weik M., Mimicking Photoactivation: X-ray–Induced Decarboxylation in Fatty Acid Photodecarboxylase.

 

 

Ensemble, ces travaux renforcent la compréhension du mécanisme catalytique de FAP et consolident la base nécessaire à son ingénierie.

 

Les travaux se poursuivent pour identifier des variants combinant une meilleure photostabilité et une activité accrue sur des acides gras courts.

 

Lison Royer développe une méthode de criblage colorimétrique fondée sur la variation de pH induite par la photodécarboxylation des acides gras et la protonation consécutive du radical alkyle formé. Cette méthode permettrait de cribler à haut débit l’activité catalytique de variants de la FAP.

 

En parallèle, Théodore Michielin étudie la possibilité de stabiliser l’état actif et oxydé du cofacteur flavinique de la FAP en appliquant un potentiel électrique à une solution de FAP en présence de médiateurs rédox appropriés.

 

Finalement, Elsa Balduzzi étudie la spécificité de liaison de la FAP de type sauvage vis-à-vis de substrats d’acides gras et des n-alcanes correspondants de différentes longueurs de chaîne, afin de mieux comprendre les étapes limitantes du cycle catalytique pour les substrats à chaîne courte et moyenne en comparaison avec les acides gras à longue chaîne. En parallèle, elle utilise des approches de conception computationnelle des protéines pour identifier des mutations de la FAP susceptibles d’améliorer ses interactions avec les acides gras à chaîne moyenne et d’optimiser son efficacité catalytique.

 

 

Les nouveaux biocatalyseurs basés sur la FAP pourront à terme être intégrés à des procédés de conversion d’huiles in vitro ou in vivo dans des microorganismes hétérotrophes et/ou photosynthétiques cultivés en photobioréacteurs. GreenCatFAP ouvre ainsi des perspectives pour la production plus durable d’hydrocarbures biosourcés.

 

Résumé de soumission

L’acide gras photodécarboxylase (FAP) est l'une des rares photoenzymes naturelles décrites à ce jour. Elle catalyse la photo-décarboxylation des acides gras à longue chaîne (C16-C18) en hydrocarbures. Notre découverte de la FAP et la description initiale de sa structure et de son mécanisme ont engendré des travaux dans de nombreux laboratoires, qui visaient à mieux comprendre son activité catalytique et à commencer à explorer son potentiel en biotechnologie. En effet, la FAP a plusieurs applications potentielles importantes en chimie verte, telles que la synthèse de biocarburants et de molécules à haute valeur ajoutée.
Deux obstacles majeurs doivent cependant être surmontés en vue d’optimiser la FAP pour des applications industrielles: augmenter sa résistance à la photodégradation et déplacer l'efficacité catalytique vers des substrats plus courts (C6-C12), donnant des hydrocarbures liquides. Notre projet ‘GreenCatFAP’ vise à surmonter ces obstacles en combinant conception rationnelle, mutagenèse aléatoire et modélisation moléculaire pour produire des mutants de FAP avec une photostabilité accrue et une spécificité de substrat modifiée.
‘GreenCatFAP’ vise à développer des biocatalyseurs uniques qui peuvent être intégrés dans la photo-production de biocarburants, donc participe à tendre vers une émission nette de carbone qui soit nulle. Une FAP modifiée serait utile non seulement dans un procédé de biocatalyse pour convertir des huiles en hydrocarbures, mais aussi pour produire des biocarburants avancés, avec des bactéries ou des micro-organismes photosynthétiques cultivés en photobioréacteurs qui expriment la FAP et produisent leurs propres acides gras.
Si financé, le projet proposé consolidera notre leadership dans les études mécanistiques sur la FAP et l'étendra à la modification de l'enzyme pour des applications biotechnologiques.

Coordination du projet

Pavel Müller (Institut de Biologie Intégrative de la Cellule)

L'auteur de ce résumé est le coordinateur du projet, qui est responsable du contenu de ce résumé. L'ANR décline par conséquent toute responsabilité quant à son contenu.

Partenariat

I2BC Institut de Biologie Intégrative de la Cellule
LOB Laboratoire d'Optique et Biosciences
BIAM Institut de biosciences et biotechnologies d'Aix-Marseille (UMR 7265)
IBS INSTITUT DE BIOLOGIE STRUCTURALE

Aide de l'ANR 729 843 euros
Début et durée du projet scientifique : février 2024 - 48 Mois

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