DS0401 - Etude des systèmes biologiques, de leur dynamique, des interactions et inter-conversions au niveau moléculaire

Caractérisation et importance physiologique de la biosynthèse d'ubiquinone sous différentes tensions d'oxygène – (An)aeroUbi

Caractérisation et importance physiologique de la biosynthèse d'ubiquinone sous différentes tensions d'oxygène

Pour produire leur énergie en absence de dioxygène (anaérobie), les bactéries utilisent la respiration anaérobie qui nécessite des quinones. En anaérobie, la fonction de l’ubiquinone (UQ) n’est pas connue. Sa voie de biosynthèse n’est pas caractérisée et implique des hydroxylases inconnues à ce jour. En étudiant la bactérie Escherichia coli, nous voulons élucider la voie de biosynthèse anaérobie de UQ, caractériser les protéines associées et comprendre les fonctions de UQ.

avancer notre compréhension du métabolisme anaérobie/microaérobie des protéobactéries

Comme de nombreux microorganismes, E. coli est une bactérie anaérobie facultative qui peut croitre en anaérobiose (absence de dioxygène) ou en aérobie afin de s’adapter aux concentrations variables en dioxygène rencontrées dans divers environnements. L’ubiquinone (UQ) est connue pour participer au métabolisme aérobie. Cependant, UQ est également produite en anaérobie par E. coli. Certaines des protéines mises en jeu dans cette voie de biosynthèse sont différentes de celles utilisées en aérobie et demeurent inconnues à ce jour. Les objectifs du projet sont : <br />1) D’identifier les gènes impliqués dans la biosynthèse anaérobie de UQ, de caractériser les protéines correspondantes et d’étudier les mécanismes réactionnels utilisés pour permettre une nouvelle chimie, les hydroxylations aromatiques en absence de dioxygène. <br />2) De caractériser biochimiquement et structuralement les protéines impliquées spécifiquement dans la biosynthèse aérobie de UQ (UbiJ, UbiK) et de démontrer l’existence d’un complexe regroupant plusieurs protéines Ubi. <br />3) De comprendre le remodelage entre les voies de biosynthèse aérobie et anaérobie de UQ<br />4) De comparer l’effet de mutation de gènes impliqués dans les voies communes ou spécifiques de biosynthèse de UQ sur la croissance d’E. coli en conditions de laboratoire.<br /><br />Nos résultats pourraient révéler une nouvelle classe d’enzyme capable de catalyser des réactions d’hydroxylation en absence de dioxygène. La caractérisation d’un complexe multiprotéique regroupant la plupart des protéines impliquées dans la voie de biosynthèse aérobie de UQ établira l’organisation supramoléculaire de la voie de biosynthèse d’un métabolite cellulaire important. La caractérisation de la dynamique de la biosynthèse de UQ en anaérobie et de son importance physiologique révélera un aspect important du métabolisme microaérobie-anaérobie d’une large classe de protéobactéries.

Afin d’obtenir une compréhension de la biosynthèse aérobie et anaérobie de UQ chez E. coli et l’importance physiologique de UQ dans diverses conditions, nous combinons des approches multi-disciplinaires : la génétique et physiologie des microorganismes, la biologie moléculaire et l’imagerie cellulaire, la biochimie et biologie structurale des protéines ainsi que la synthèse organique de molécules.
Afin de caractériser les protéines UbiJ et UbiK, leur interaction avec d’autres protéines Ubi et leur capacité à lier des lipides, nous utilisons des techniques de biochimie des protéines : surexpression et purification, SEC-MALLS et cristallographie des rayons X, mutagénèse dirigée et fluorescence intrinsèque.
Nous étudions le complexe Ubi multiprotéique par une technique d’électrophorèse native (BN-PAGE) couplée à l’immuno-détection, par microscopie des protéines Ubi fusionnées à des protéines fluorescentes (GFP, m-Cherry) et par purification d’affinité en tandem.
Nous évaluerons le remodelage de la biosynthèse de UQ entre des conditions aérobies et anaérobies par une quantification des transcrits par qRT-PCR, par immunodetection des protéines d’intérêt et par microscopie de fluorescence.
L’identification des gènes impliqués dans la biosynthèse anaérobie de UQ sera réalisée grâce à une approche génétique, par génomique comparative, ou par une approche biochimique incluant la purification du complexe putatif anaérobique de biosynthèse de UQ et l’établissement de sa composition par analyse protéomique.
Nous étudierons l’importance physiologique de UQ synthétisée en conditions anaérobies/microaérobies grâce à des expériences de compétition entre des souches sauvage et mutantes d’E. coli privées d’UQ.

La caractérisation biochimique de UbiJ et UbiK a été réalisée et a permis de démontrer que les 2 protéines forment un hétérotrimère (UbiK2-UbiJ1) et qu’UbiJ pouvait lier l’acide palmitoléique, un lipide endogène d’E. coli. Ces résultats ont été publiés en juin 2017 avec la description de l’implication du nouveau gène ubiK dans la biosynthèse aérobie de UQ chez E. coli.
Nous avons montré que de nombreuses protéines Ubi co-migrent à environ 1 MDa sur gel BN-PAGE. La microscopie de fluorescence a permis de détecter uniquement certaines protéines Ubi et a montré que ces protéines co-localisaient dans la cellule. Ces résultats sont en accord avec l’existence d’un complexe multiprotéique participant à la synthèse aérobie de UQ et nous tentons maintenant de purifier ce complexe et d’établir sa composition.
Grâce à une approche génétique, nous avons identifié deux nouveaux gènes de fonction inconnue qui sont essentiels à la biosynthèse de UQ en anaérobie. Nous suspectons que ces protéines pourraient catalyser les étapes d’hydroxylation de la biosynthèse anaérobie de UQ. Nous essayons actuellement de purifier ces protéines et de mettre en place des tests d’activité afin de préciser leur fonction.
Concernant la fonction de UQ en anaérobie, nous avons réfuté la proposition de Sauer et Sevin selon laquelle UQ participe à la stabilité des membranes d’E. coli et à sa résistance au stress osmotique en conditions aérobies (Nat Chem Biol, 2014). En effet, contrairement à ces auteurs, nous n’avons pas observé de sensibilité au NaCl de plusieurs mutants déficient en UQ ni en aérobie ni en anaérobie. Nous allons dorénavant nous concentrer sur l’étude d’autres fonctions potentielles de UQ en anaérobie comme sa contribution à la respiration microaérobique.

Nous pensons que les hydroxylases de la voie de biosynthèse anaérobie d’E. coli pourraient appartenir à une nouvelle classe d’enzyme capable de catalyser des réactions d’hydroxylation en absence de dioxygène. La découverte et la caractérisation de telles enzymes, probablement largement répandues chez les microorganismes anaérobies, pourrait ouvrir de nouvelles voies dans le développement de catalyseurs d’hydroxylation respectant les principes de la chimie verte.
En caractérisant la dynamique de la biosynthèse de UQ en anaérobie, son organisation et son importance physiologique, nous contribuerons à obtenir une meilleure compréhension du métabolisme microaérobie-anaérobie d’une large classe de protéobactéries, dont plusieurs sont virulentes. Nos travaux précédents démontrant l’importance de l’UQ pour la virulence de Salmonella en conditions aérobies laissent penser UQ pourrait également être un facteur de virulence en anaérobie. Si tel était le cas, notre identification de gènes - non conservés chez l’homme - impliqués dans la biosynthèse anaérobie de UQ pourrait ouvrir des pistes pour le développement de nouveau antibactériens.

Loiseau, L., Fyfe, C., Aussel, L., Hajj Chehade, M., Hernandez, S.B., Faivre, B., et al. (2017). The UbiK protein is an accessory factor necessary for bacterial ubiquinone (UQ) biosynthesis and forms a complex with the UQ biogenesis factor UbiJ. J Biol Chem. doi: 10.1074/jbc.M117.789164.

Pelosi, L., Ducluzeau, A.L., Loiseau, L., Barras, F., Schneider, D., Junier, I., et al. (2016). Evolution of Ubiquinone Biosynthesis: Multiple Proteobacterial Enzymes with Various Regioselectivities To Catalyze Three Contiguous Aromatic Hydroxylation Reactions. mSystems 1(4), e00091-00016. doi: 10.1128/mSystems.00091-16.

La respiration est un processus biologique essentiel car le gradient électrochimique qu’elle génère de part et d’autre des membranes est utilisé pour la production d’énergie et le transport actif. Les quinones jouent un rôle clé comme transporteurs d’électrons et de protons dans les chaînes respiratoires. Chez la bactérie modèle Escherichia coli, le pool de quinones est constitué d’ubiquinone (UQ) utilisée essentiellement dans la respiration aérobie et de deux naphtoquinones principalement impliquées dans la respiration anaérobie. En plus de la respiration, les quinones sont impliquées dans d’autres fonctions cellulaires importantes comme la formation de ponts disulfures à l’intérieur des protéines, la régulation transcriptionnelle, la lutte contre certaines formes réactives de l’oxygène et la stabilisation des membranes.

La biosynthèse d’UQ est un processus complexe, incomplètement caractérisé, qui nécessite au moins 11 protéines. E. coli synthétise UQ aussi bien dans des conditions de croissance aérobie qu’anaérobie. Nos travaux récents sur la voie biosynthétique aérobie ont permis de préciser la fonction de certaines protéines de biosynthèse d’UQ et de découvrir de nouvelles protéines (JBC in 2013 and J Bacteriol. in 2014). Tout semble indiquer que ces protéines agissent de façon concertée au sein d’un complexe protéique. La biosynthèse et les rôles physiologiques d’UQ en conditions anaérobie et microaérobie sont moins documentés malgré le fait que ces conditions soient fréquemment rencontrées par E. coli dans différentes niches écologiques. Si certains acteurs protéiques participent aux deux voies de biosynthèse d’UQ, nos résultats préliminaires indiquent que plusieurs acteurs protéiques sont spécifiques de la voie aérobie ou de la voie anaérobie. Notre projet a pour but d’accéder à une compréhension détaillée et intégrée de la biosynthèse d’UQ chez E. coli en conditions aérobies et anaérobies et de tester l’importance physiologique de l’UQ pour diverses fonctions cellulaires dans des cultures de laboratoires ainsi que pour la colonisation de différents hôtes. Afin d’atteindre ce but, les trois partenaires emploieront une approche pluridisciplinaire incluant : (i) la génétique et physiologie des microorganismes ; (ii) la biologie moléculaire et l’imagerie cellulaire ; (iii) la chimie des protéines et la biologie structurale ainsi que la synthèse organique.

Nous focaliserons nos études biochimiques et structurales sur les protéines Ubi que nous avons récemment identifiées afin d’établir leur fonction. Deux de ces protéines sont spécifiques de la voie aérobie et une de la voie anaérobie. Nous éluciderons leur contribution au remodelage de la biosynthèse d’UQ qui prend place entre des conditions aérobies et anaérobies. Nous chercherons en particulier à confirmer l’existence et à mieux caractériser un complexe regroupant plusieurs protéines Ubi. La biosynthèse d’UQ nécessite des étapes d’hydroxylation du noyau aromatique. Dans des conditions aérobies, cette réaction utilise l’oxygène moléculaire comme source d’atomes d’oxygène. Dans ce projet, nous proposons plusieurs approches indépendantes pour identifier, pour la première fois, les hydroxylases anaérobies de la biosynthèse d’UQ qui catalysent des réactions d’hydroxylation indépendamment de l’oxygène. Des enzymes de cette classe existent probablement chez les microorganismes anaérobies stricts mais n’ont pas encore été identifiées ni caractérisées. Finalement, afin de mieux appréhender les fonctions remplies par UQ, nous proposons des expériences in vivo basées sur la comparaison des phénotypes de mutants de la synthèse aérobie et/ou anaérobie d’UQ chez E. coli. L’ensemble de nos résultats élucidera les raisons pour lesquelles E. coli produit UQ aussi bien en présence qu’en absence de dioxygène et les moyens qu’elle a développés pour cela.

Coordinateur du projet

Monsieur Fabien Pierrel (Laboratoire Techniques de l'Ingénierie Médicale et de la Complexité - Informatique, Mathématiques et Applications, Grenoble)

L'auteur de ce résumé est le coordinateur du projet, qui est responsable du contenu de ce résumé. L'ANR décline par conséquent toute responsabilité quant à son contenu.

Partenaire

INSTITUT PASTEUR Département de Microbiologie STRESS ADAPTATION AND METABOLISM- INSTITUT PASTEUR
TIMC-IMAG Laboratoire Techniques de l'Ingénierie Médicale et de la Complexité - Informatique, Mathématiques et Applications, Grenoble
CNRS DR12 - LCB Centre National de la Recherche Scientifique - Délégation Provence et Corse - Laboratoire de Chimie Bactérienne
LCPB- CNRS UMR8229- College de France Laboratoire de Chimie des Processus Biologiques

Aide de l'ANR 541 254 euros
Début et durée du projet scientifique : octobre 2015 - 48 Mois

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