Réseaux de fibres 3D pour l'analyse automatique de la dynamique cellulaire – FibersForCells
Réseaux de fibres 3D pour l'analyse automatique de la dynamique cellulaire
Le but du projet FibersForCell est de construire des architectures de fibres 3D d’architecture, chimie et propriétés mécaniques contrôlées à l’échelle subcellulaire, puis d’y quantifier automatiquement la dynamique cellulaire (migration, activités protrusives) et les forces 3D exercées.
Construction de réseaux de fibres 3D aux propriétés microtopographiques, chimiques et mécaniques contrôlées, et étude du comportement dynamique de cellules tumorales, immunitaires et de fibroblastes.
Afin de reproduire des organisations prototypiques caractéristiques des matrices extracellulaires natives, dont les propriétés contrôlent le comportement cellulaire, nous nous baserons sur la technique de polymérisation deux-photons pour laquelle le consortium a développé précédemment une expertise en contrôle de la chimie, de l’architecture et de l’analyse automatique des comportements cellulaires induits par la microtopographie. Nous relèverons les défis restants consistant à reproduire les différents types d’architecture, à développer les techniques chimiques de fonctionnalisation de surface et de photopolymérisation de protéines - en nous concentrant sur la polymérisation de collagène et dérivés, et l’étude et le contrôle de leur dégradation -, puis à mettre au point la quantification des forces 3D exercées par les cellules et l’application de stimulations mécaniques supplémentaires globales ou locales, et enfin à automatiser l’analyse automatique d’images.
Nous développerons un ensemble de grilles 3D de fibres déformables avec maillages réguliers ou gradients d’espacements, de rigidité ou de réticulation, avec le but de reproduire de manière simplifiée un ensemble de propriétés génériques de la matrice extracellulaire, et notamment d’avoir accès à des phénomènes d’exploration de réseaux 3D de fibres déformables, isotropes ou non, ou de migration selon des gradients de rigidité ou des gradients topographiques (durotaxie et topotaxie). Ces grilles seront basées sur deux types de chimie : fibres de diacrylate de polyéthylène glycol (recouvertes de fibronectine) pour une modulation optimale des propriétés mécaniques, ou de collagène pour le caractère biomimétique et dégradable, avec la possibilité d’assemblages composites déjà opérationnelle. Un des grands atouts du système repose sur la détection intégrée des forces 3D exercées par les cellules, d’après l’analyse automatique de la déflexion 3D des fibres, la caractérisation des propriétés mécaniques par Microscopie à Force Atomique, et le développement d’un modèle d’éléments finis. Nous étudierons dans ces grilles le comportement d’un éventail de cellules marquées pour l’actine et le noyau : fibroblastes, cellules tumorales avec différentes propriétés invasives, et cellules immunitaires - macrophages et cellules dendritiques. L’acquisition de séquences d’images par des techniques de spinning disk ou de microscopie Lattice Light Sheet, et le développement d’analyse d’images basée sur des techniques d’intelligence artificielle, nous permettront de définir de manière systématique des descripteurs du comportement cellulaire, à l’échelle globale (forme cellulaire, migration et biais de migration, forme et déformation du noyau) ou locale (forces 3D locales, dégradation locale, protrusions cellulaires). Ces résultats nous permettront de définir des optimums d’organisation cellulaire et d’avoir accès de manière systématique à l’influence des différents paramètres géométriques de la matrice.
Notre méthode innovante de quantification des forces 3D dans les réseaux de fibres est maintenant dans son étape finale, et fait l'objet d'une publication en rédaction.
Ce projet interdisciplinaire, actuellement dans une phase de développement rapide, s’appuie sur un large corpus de résultats préliminaires du consortium et sur un fort réseau collaboratif couvrant les champs de la biomécanique, de la technologie et de la biologie cellulaire. La mise au point de ce système de fibres 3D sera d’un intérêt général pour la communauté des biologistes : en effet, il permet de mimer un grand nombre d’organisations génériques de la matrice extracellulaire observées dans des situations physiologiques ou pathologiques, comme des gradients de densité de fibres ou de rigidité. Au-delà des types cellulaires étudiés dans le projet, l’analyse du comportement de cellules souches dans les grilles de fibres 3D serait particulièrement pertinente, puisque leur différenciation dépend étroitement de la rigidité et des nanotopographies. De manière générale, le développement de ce système de fibres 3D pleinement contrôlées ouvrira la voie à des applications pour le criblage de molécules ciblant la migration, les forces de traction ou l'état de différenciation. Au-delà des cellules individuelles, l’analyse des interactions entre cellules dans ces réseaux 3D bénéficiera à de nombreux champs d’étude, comme la reconnaissance immunitaire, la formation de myotubes, l'angiogenèse ou la migration collective à partir de sphéroïdes tumoraux. Notre projet est basé sur l’étude de réseaux de fibres 3D génériques avec des architectures simplifiées, mais les développements technologiques réalisés en polymérisation biphotonique pourront être utilisés pour des approches reconstituant toute la complexité de la matrice 3D à partir d'images in vivo. Enfin, des structures réalisées par polymérisation biphotonique ont été proposées en médecine régénérative, et la construction de réseaux 3D contrôlés de fibres de collagène ouvrirait une nouvelle possibilité de transfert vers des bio-implants.
Productions reliées antérieures :
1. Ucla P, Ju X, Demircioglu M, Baiz S, Muller L, Germain S, Monnot C, Semetey V, Coscoy S. (2022) Dynamics of endothelial engagement and filopodia formation in complex 3D microscaffolds. Int. J. Mol. Sci., 23(5), 2415. Special Issue 3D Printing and Biomaterials for Biological and Medical Application. doi.org/10.3390/ijms23052415
2. Coscoy S, Baiz S, Octon J, Rhoné B, Perquis L, Tseng Q, Amblard F, Semetey V. (2018) Microtopographies control the development of basal protrusions in epithelial sheets. Biointerphases. 13(4):041003. doi: 10.1116/1.5024601.
Le but du projet FibersForCell est de construire des architectures de fibres 3D d’architecture, chimie et propriétés mécaniques contrôlées à l’échelle subcellulaire, puis d’y quantifier automatiquement la dynamique cellulaire (migration, activités protrusives) et les forces 3D exercées. Afin de reproduire des organisations prototypiques caractéristiques des matrices extracellulaires natives, dont les propriétés contrôlent le comportement cellulaire, nous nous baserons sur la technique de polymérisation deux-photons pour laquelle le consortium a développé précédemment une expertise en contrôlant la chimie, l’architecture et l’analyse automatique des comportements cellulaires induits par la microtopographie. Nous relèverons les défis consistant à reproduire les différents types d’architecture, à développer les techniques chimiques de fonctionnalisation de surface et de photopolymérisation de protéines - en nous concentrant sur la polymérisation de collagène et dérivés, et l’étude et le contrôle de leur dégradation -, puis à mettre au point la quantification des forces 3D exercées par les cellules et l’application de stimulations mécaniques supplémentaires globales ou locales, et enfin à automatiser l’analyse automatique d’images. De manière concrète, nous développerons un ensemble de grilles 3D de fibres déformables avec maillages réguliers ou gradients d’espacements, de rigidité ou de réticulation, dans l’optique de reproduire de manière simplifiée un ensemble de propriétés génériques de la matrice extracellulaire, et notamment d’avoir accès à des phénomènes d’exploration de réseaux 3D de fibres déformables, isotropes ou non, ou de migration selon des gradients de rigidité ou des gradients topographiques (durotaxie et topotaxie). Ces grilles seront basées sur deux types de chimie : fibres de diacrylate de polyéthylène glycol (recouvertes de fibronectine) pour une modulation optimale des propriétés mécaniques, ou de collagène pour le caractère biomimétique et dégradable, avec la possibilité d’assemblages composites. Enfin, une des grands atouts du système repose sur la détection intégrée des forces 3D exercées par les cellules. Nous étudierons dans ces grilles le comportement d’un éventail de cellules marquées pour l’actine et le noyau : fibroblastes, cellules tumorales avec différentes propriétés invasives, et cellules immunitaires - macrophages et cellules dendritiques. L’acquisition de séquences d’images par des techniques de spinning disk ou de microscopie Lattice Light Sheet, et le développement d’analyse d’images basée sur des techniques d’intelligence artificielle, nous permettront de définir de manière systématique des descripteurs du comportement cellulaire, à l’échelle globale (forme cellulaire, migration et biais de migration, forme et déformation du noyau) ou locale (forces 3D locales, dégradation locale, protrusions cellulaires). Ces résultats nous permettront de définir des optimums d’organisation cellulaire et d’avoir accès de manière systématique à l’influence des différents paramètres géométriques de la matrice. Ce projet interdisciplinaire, actuellement dans une phase de développement rapide, s’appuie sur un large corpus de résultats préliminaires du consortium et sur un fort réseau collaboratif couvrant les champs de la chimie, de la microfabrication, de la biomécanique, de l’imagerie et de la biologie cellulaire. La mise au point de ce système de fibres 3D sera d’un intérêt général pour la communauté des biologistes. Les avancées technologiques en chimie et microfabrication pourront par la suite bénéficier à d’autres types d’études visant à reconstituer la pleine complexité de la matrice extracellulaire, ou à des possibilités futures d’utilisation des fibres de collagène dans des bio-implants. De manière plus générale, notre système de fibres 3D pleinement contrôlées ouvrira la voie à de nombreuses applications futures dans les domaines du criblage de drogues ou du contrôle de la différenciation cellulaire.
Coordination du projet
Sylvie COSCOY (Unite physico-chimie Curie, UMR168)
L'auteur de ce résumé est le coordinateur du projet, qui est responsable du contenu de ce résumé. L'ANR décline par conséquent toute responsabilité quant à son contenu.
Partenaire
PCC Unite physico-chimie Curie, UMR168
IRCP Institut de Recherche de Chimie Paris
Aide de l'ANR 541 020 euros
Début et durée du projet scientifique :
- 42 Mois